《表4 白芸豆α-AI纯化过程中各步骤的α-AI活性(IC50值)及提取率》

《表4 白芸豆α-AI纯化过程中各步骤的α-AI活性(IC50值)及提取率》   提示:宽带有限、当前游客访问压缩模式
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《白芸豆中α-淀粉酶抑制剂的提取纯化及活性测定条件优化》


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经过最优提取工艺提取,酸沉-醇沉、超滤、透析所得的α-AI电泳图分别如图4中a、b、c、d图所示。a图结果显示白芸豆水提液中共分离出5条主要的蛋白亚基条带,这与訾艳[2]制备的白芸豆清蛋白的电泳图相似,其中分子量在35 ku附近的条带颜色最深,这与多数文献中报道的白芸豆中α-AI的分子量在30.0~36.0 ku之间相符,因此该条带很有可能就是α-AI。从b图可以看出,经过酸沉-醇沉后,所得沉淀物中分子量大于40 ku的条带明显减少,而在35 ku附近的条带却变得更加明显,从表4得该沉淀物的IC50为7.16±0.06 mg/mL,高于水提液的IC50 (11.02±0.12 mg/mL),这表明经过酸沉-醇沉后,α-AI达到了一定的纯化效果。c图结果表明超滤能除去醇沉所得沉淀物中分子量在55 ku附近的条带和大部分25 ku附近的条带,从表4得超滤所得α-AI的IC50为2.78±0.08 mg/m L,这表明经过超滤α-AI得到了进一步纯化,同时也进一步证明35 ku附近的蛋白条带即为α-AI。d图结果表明透析能够除去分子量大于35 ku的蛋白条带,从而得到较纯的α-AI,经测定得终纯化α-AI的IC50为0.89±0.04 mg/m L,相比于粗提物,抑制活性提高了12.38倍,提取率为(1.92±0.23)%,这与王文蒙[11]采用色谱法提纯所得α-AI的活性(IC50为0.60 mg/m L)和提取率(1.84%)相近。此外在相同条件下测定了终纯化α-AI的抑制率(88.97±2.14)%,发现其与文献[12]所得结果(抑制率为90.4%)相近,但提取率相比文献[12](0.12%)提高了16倍。因此相比于色谱法及其他方法,本方法更为简单、方便、高效、而且成本低,不需要用到任何昂贵的仪器,因此适合于大多普通实验室进行研究,同时也可为α-AI的低成本工业化生产提供一定的指导意义。