《表1 PEDV S基因和ORF3基因特异引物序列》
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《猪流行性腹泻病毒变异株GDqy2017的分离及S和ORF3基因序列分析》
PEDV的分离参考Hoffmann M等[4]建立的方法,稍做修改,具体如下:按常规方法培养Vero细胞,传入6孔板,待其长至单层且状态良好,弃去培养液,PBS洗板2次,将上述处理好的病毒液用细胞培养液DMEM稀释5倍,500μL/孔传入6孔板,轻轻晃动,使病毒液均匀覆盖细胞表面,将6孔板置于37℃、体积分数为5%CO2的培养箱中孵育1h,期间晃动数次,1h后取出培养板,弃去病毒液,PBS洗板1次,加入含10μg/mL胰酶的DMEM培养液2mL,再次置于培养箱培养,每天观察,待其出现明显细胞病变(cytopathic effect,CPE)或者培养至7d,收毒,记为第1代,置于-70℃保存或者反复冻融3次,在Vero细胞中继续传代培养。1.2.5 S基因和ORF3基因序列克隆及测序根据GenBank收录的PEDV CV777全基因组序列设计特异引物(引物序列见表1),扩增分离毒株的S基因和ORF3基因全序列,电泳结果为阳性的PCR产物,进行纯化并克隆测序。
图表编号 | XD0016709200 严禁用于非法目的 |
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绘制时间 | 2018.09.20 |
作者 | 楚品品、蒋智勇、林德锐、徐志宏、李艳、勾红潮、卞志标、李春玲、蔡汝健 |
绘制单位 | 广东省农业科学院动物卫生研究所、广东省畜禽疫病防治研究重点实验室、农业部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站、广东省农业科学院动物卫生研究所、广东省畜禽疫病防治研究重点实验室、农业部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站、广东永顺生物制药股份有限公司、广东省农业科学院动物卫生研究所、广东省畜禽疫病防治研究重点实验室、农业部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站、广东省农业科学院动物卫生研究所、广东省畜禽疫病防治研究重点实验室、农业部兽用药物与诊断技术广东科学观测实验站、广东省农业科学院动物卫生研究所、广东省畜 |
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