《表2 不同物种ADSCs流式染色情况》

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《小鼠、大鼠、食蟹猴与人的脂肪干细胞分离培养方法和生物学特性的比较分析》

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分别取hADSCs、m ADSCs、r ADSCs、cADSCs第3代的细胞，PBS洗2次后培养瓶中加入0.25%Trpsin-0.04%EDTA，37℃下反应5 min，吸管反复吹打，镜下确认细胞完全漂浮和分离，加入等量的细胞培养液中和胰蛋白酶，进行计数，将1×106的细胞分装于1.5 m L离心管，离心后弃上清。各物种染色情况如表2:hADSCs和cADSCs分别每管加入40μL PBS+5μL CD90（FITC）、5μL CD29（PerCP-Cy5）、5μL CD34（APC-Cy7）、5μL CD31（PE-Cy7）人单克隆抗体，m ADSCs每管加入40μL PBS+5μL CD90（FITC）、5μL CD29（PE）、5μL CD45（PerCP-Cy5）、5μL CD31（APC-Cy7）小鼠单克隆抗体，r ADSCs每管加入40μL PBS+5μL CD90（PE）、CD29（PE-Cy7）、CD34（APC）、CD31（BV421）大鼠单克隆抗体，4℃避光孵育30 min，PBS洗3次，1500 r/min离心5 min，20μL PBS重悬，并用同型对照单克隆抗体确定背景标记后，流式细胞仪分析染色细胞，FlowJo软件计算细胞表面抗原阳性表达率（单位用百分比表示）。