《表1 分组方案:屎肠球菌活菌和热灭活菌对RAW264.7细胞肿瘤坏死因子-α/白细胞介素-10平衡以及丝裂原活化蛋白激酶信号通路的影响》

《表1 分组方案:屎肠球菌活菌和热灭活菌对RAW264.7细胞肿瘤坏死因子-α/白细胞介素-10平衡以及丝裂原活化蛋白激酶信号通路的影响》   提示:宽带有限、当前游客访问压缩模式
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《屎肠球菌活菌和热灭活菌对RAW264.7细胞肿瘤坏死因子-α/白细胞介素-10平衡以及丝裂原活化蛋白激酶信号通路的影响》


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采用CCK-8法检测不同剂量的屎肠球菌活菌或热灭活菌对RAW264.7细胞活力的影响,确定后续试验的适宜细菌与细胞比率。将RAW264.7细胞培养至汇合达80%~90%时进行传代铺板。用DMEM细胞完全培养液调整细胞密度为5×105个/mL,在6孔板中每孔加细胞悬液和DMEM细胞完全培养液各1 mL,放入37℃、5%CO2培养箱中孵育24 h,去上清,用PBS洗涤2次,然后根据3因素2水平设计试验方案。因素1和水平:屎肠球菌类型,活菌或灭活菌;因素2和水平:剂量,106或108CFU/mL;因素3和水平:作用时间,3或6 h。在3和6 h作用时间下分别设置阴性对照(DMEM细胞基础培养液,即不含血清、不含抗生素)和阳性对照(LPS,2μg/mL)。试验共设12个组(表1),每个组各设6个重复。各组的细胞都在37℃、5%CO2培养箱中孵育。试验结束后,将细胞培养板放置于冰上,马上收集各个组的细胞培养上清,并将上清于4℃、6 000 r/min离心10 min去除颗粒物质,然后-40℃保存,待检测细胞因子含量。