《表2 EGSBBR与其他反应器产甲烷启动比较》

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《微氧EGSBBR产甲烷系统快速启动与微生物群落特性》

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由图3可知，第Ⅰ阶段污泥EPS提取物中只出现了类蛋白A峰（Ex/Em=200～235nm/285～345nm)、B峰（Ex/Em=270～300nm/300～350nm），样品不同层EPS提取物的荧光峰位置有不同程度的偏移，说明其化学结构及组成成分存在差异；可以发现第Ⅰ阶段S-EPS、LB-EPS提取物中A峰的荧光区域很小，且未扫描出类蛋白B峰，表明提取物中芳香族、色氨酸等类蛋白物质含量少，这点在表3中蛋白质浓度上也有体现；培养至第Ⅲ阶段，污泥EPS提取物中类蛋白峰荧光强度显著增强，还出现了类富里酸D峰（Ex/Em=250～260nm/415～460nm）、类腐殖酸F峰（Ex/Em=370～415nm/450～480nm）两种峰，该阶段样品中S-EBS和LB-EPS峰的位置相对稳定，TB-EPS峰的位置较前两种EPS提取物的激发和发射波长均所增大，除此之外S-EPS、LB-EPS和TB-EPS的类蛋白类A峰位置分别由（214nm/285nm）、（218nm/290nm）和（220nm/330nm）移动至224nm/330nm）、（224nm/330nm）和（226nm/345nm)，TB-EPS中B峰位置由（276nm/345nm）移动至（284nm/350nm），表明两种类蛋白类物质的激发和发射波长均发生了红移，这可能是从第Ⅰ至第Ⅲ阶段EPS提取物内如羰基、氨基、羟基、羧基等官能团数量增加[19]，多糖、蛋白质浓度的显著提高，说明了第Ⅲ阶段污泥更加稳定，代谢方式途径更加丰富，为系统中微生物不同功能菌群之间相互作用提供了良好的环境。