《表2基于No r m f\n\t\t\t\t\ti n d\n\t\t\t\t\te r软件分析候选m i RA N内参基因的稳定性Ta b l e2Th e s t a b

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《核桃(Juglans regia L.)MicroRNA实时荧光定量RT-PCR内参基因的筛选》


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RT-qPCR因其快速、灵敏、特异等优势已被广泛用于基因的表达分析。选择合适的内参基因对数据进行标准化是得到正确结果的关键(尹冬梅等,2017)。理想内参基因在不同基因型、不同组织和不同实验条件下均能稳定表达。然而,大量研究表明并没有绝对稳定的基因(Kulcheski et al.,2010)。目前,关于miRNA定量分析的内参筛选多集中于医学及动物研究领域。在植物miRNA的定量分析中,5S rRNA(Qu et al.,2016)、5.8S rRNA(Sun et al.,2017)、18S r-RNA(Li et al.,2016)、U6 snRNA(Bai et al.,2016)等常用作内参基因。本研究中,U6 sn RNA的扩增效率E为211.1%,相关系数R2为0.600,不适合作为内参基因。这与小麦中U6 snRNA(E:458.6%;R2:0.648)不适合作为内参的结果一致(Feng et al.,2012)。在龙眼中,U6 snRNA稳定性最差(Lin and Lai,2013),而在柑橘中,U6 snRNA稳定性排名第二(Kou et al.,2012)。由此可见,U6 sn RNA在不同物种中表达量是不稳定的。采用RT-qPCR分析了特异性较强的8个候选内参基因在不同分化期花芽与叶芽、不同组织及品种中的表达量,并利用geNorm、Normfinder和RefFinder软件对其稳定性进行了评价。结果表明,没有一个候选内参基因在各实验中均稳定表达。在不同分化期花芽中,geNorm显示jre-miR159c为最稳定的单基因,jre-miR394a和jre-miR159a为最稳定的组合。V3/4小于0.15(图4E),需要三个内参基因,即jre-miR394a、jre-miR159a和jre-miR159c。Normfinder显示稳定性排名前三分别是jre-miR394a、jre-miR159a和jre-miR159c。RefFinder结果与Normfinder完全一致。在不同分化期叶芽中,geNorm显示最稳定的单基因为jre-miRn7,最稳定的组合为5.8S rRNA和jre-miRn3。V2/3小于0.15(图4E),最适的内参数目为2个,即5.8S r RNA和jre-miRn3。Normfinder则显示jre-miR167d最稳定,jre-miR159c、jre-miRn7和jre-miR394a次之。RefFinder显示5.8S rRNA最稳定,jre-miRn3、jre-miR394a和jre-miRn7次之。在生物胁迫和非生物胁迫下的小麦中,最适的内参基因为miR167和miR159(Feng et al.,2012)。在干旱胁迫下的大豆叶中,最适的单个内参基因为miR167a,最适的内参组合为miR167a与miR1520d(刘伟灿等,2016)。在梨中,miR167d稳定性一般,不同软件分析的结果也有差异(马鑫瑞等,2018)。表明miR167在不同物种中稳定性并非稳定不变。在进行miRNA定量分析时,应根据不同的物种或同一物种的不同组织筛选最适的内参基因。在不同组织和不同品种中,三种软件分析的最稳定的基因基本一致,只是排序有所差异。这种差异可能是由不同软件的统计算法导致的。此外,所有的V值均大于0.15,且随着内参数目n的增加,V值并没有太大变化(图4E)。在小麦不同组织和基因型(Feng et al.,2012)、石蒜属植物不同花期和不同组织中(蒋婷婷等,2015),所有V值也大于0.15。其原因可能是不同组织、不同品种和基因型跨度较大,样本数目不够或检测的内参基因数目有限。geNorm操作说明也提到Vn/n+1并非一定要设置为0.15(Vandesompele et al.,2002)。因此,在不同实验条件下,应结合不同软件筛选出最适的内参基因。