《表2 船基培养实验中VHCs和Chl-a浓度的相关性》

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《西太平洋添加营养盐培养实验中挥发性卤代烃含量动态变化》

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注:*.在0.05水平（双侧）上显著相关；**.在0.01水平（双侧）上显著相关.

船基培养实验过程，前5d实验组M1～M5中C2HCl3的浓度变化趋势相似，培养桶中C2HCl3浓度变化范围在10%左右.从第5d至C2HCl3浓度峰值出现，M2-M5中C2HCl3浓度平均每天增加15%以上.M1中C2HCl3浓度变化幅度最小.M1和M4桶中C2HCl3浓度在第9d到达峰值，M2和M5桶中C2HCl3浓度在13d到达峰值，M3桶中C2HCl3浓度在15d到达峰值.M1-M5桶中C2HCl3峰值浓度分别为初始浓度的3，8，6，11和7倍左右.增长到峰值后，各培养桶中C2HCl3浓度开始下降之后保持相对稳定的浓度.M1-M5培养桶CHBr2Cl和CHBr3在培养期间出现3个明显的峰值，分别在第9d，15d和20d.此外，CHBr2Cl和CHBr3的浓度在培养桶中的变化趋势相似，添加营养盐的培养桶中CHBr2Cl和CHBr3释放量明显大于未添加营养盐培养桶（图4）.由上文结果描述知，VHCs释放量均表现为M2-M5（添加营养盐）>M1（未添加营养盐）培养桶，表明营养盐的加入能够提高VHCs的产生释放.Abrahamsson等[7]通过实验室单种培养实验发现海洋微藻能生产释放C2HCl3.Colomb等[9]和Carpenter等[10]的研究也证实了海洋浮游植物能释放C2HCl3.同时，C2HCl3的浓度变化与Chl-a的浓度变化趋势相似，相关性分析结果发现二者相关性显著（表2），推测C2HCl3可来源于浮游植物的生产释放，浮游植物的大量繁殖能促使其释放更多的C2HCl3.此结果与Scarratt和Moore报道的相一致[27].Tokarczyk等[28]研究发现两种冷水海洋硅藻（Nigzschia和Porosira glacialis）能产生释放CHBr2Cl和CHBr3.Hughes等[29]和Lim等[8]也证实了CHBr3和CHBr2Cl可以来自海洋浮游植物的释放此外，李冠霖等[30]和宫建等[31]研究发现CHBr3的浓度受浮游植物生物量的影响.因此这一结果可能是由于NO3--N，PO43--P，NH4+-N作为藻类生长的必需营养盐，营养盐添加对浮游植物的生长具有一定的促进作用.齐雨藻等[32]发现在NO3--N对海洋原甲藻的生长有促进作用.朱从举等[33]和秦晓明等[34]也证实了NO3--N和PO43--P对海洋原甲藻和锥状斯克里普藻都有着明显的促进生长作用.营养盐含量高低直接影响藻类的生长状态[35]，从而间接影响VHCs的产生[18].且NO3--N添加量最多的M3桶中C2HCl3和C2Cl4的释放累积量（累积浓度[36]表征培养期间VHCs的累积量:大于其他培养桶(图5），说明添加NO3--N能明显增加C2HCl3和C2Cl4的释放量.此外，M3中Chl-a水平最高，推测营养盐的添加能提高培养桶中的生产力水平，从而间接影响培养桶中浮游植物释放C2HCl3和C2Cl4的量.额外添加NH4+-N的M5培养桶大于额外添加NO3--N的M4培养桶中VHCs的生产量，M5>M4的Chl-a水平（图2），推测NH4+-N可能更利于浮游植物吸收从而促进M5培养桶释放更多的VHCs.Dortch[24]和Flynn[37]在研究微藻对NH4+和NO3-吸收的相互作用时发现，当介质中NH4+>1μmol/L时，微藻对NO3-的吸收很少或者没有.张诚等[38]的研究也表明浮游植物优先对氨氮和尿素作为氮源进行选择性摄取，二者不足时才摄取硝酸盐.